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杨经理
广东 广州市 黄埔区
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公司新闻/正文
1816 人阅读发布时间:2019-06-26 11:56
背景
猪圆环病毒3型(porcine circovirus 3,PCV3)是猪群中流行的一种新型猪圆环病毒。2016 年在美国首次发现并报道新型猪圆环病毒3型,该病毒目前在我国流行范围逐渐扩大,对生猪养殖的潜在影响仍不明确。PCV3壳蛋白 ( capsid,Cap ) 与PCV1和PCV2的衣壳蛋白差异大,且具有良好抗原性。单克隆抗体技术(monoclonal antibody technique) 原理是: B淋巴细胞能够产生抗体, 但在体外不能进行无限分裂; 而瘤细胞虽然可以在体外进行无限传代, 但不能产生抗体。将这两种细胞融合后得到的杂交瘤细胞具有两种亲本细胞的特性。
1. 材料与方法
1.1 实验材料
免疫抗原:自制,来自大肠杆菌表达的上清纯化透析后的PCV3 Cap蛋白。
材料:细胞培养板、胎牛血清、DMEM培养基、酶标板、PEG2000、注射器、弗氏佐剂(完全和不完全)剪刀镊子、BALB/C小鼠等
1.2 制备步骤
1.2.1 抗原免疫
选择6-8周龄BALB/C小鼠作为免疫动物,第一次使用完全佛氏佐剂乳化抗原,第二次和第三次不完全佛氏佐剂,每次免疫抗原量50-100ug。每次免疫间隔两周,最后直接用免疫抗原进行加强免疫。 一般在第二次免疫一周后,尾部采血检测免疫效价。
1.2.2 细胞融合
加强免疫三天后,进行细胞融合。同时在细胞融合之前取小鼠腹腔吞噬细胞作为饲养细胞。
细胞融合具体步骤如下:
1) 将状态良好的 sp2/0 细胞轻柔的从培养瓶壁上吹打下来,吸入到 50ml 离心管中。
2) 小鼠摘眼球取血,然后拉颈处死,放入 75%的酒精中浸泡 5min。
3) 在平皿中倒入少量无血清的 DMEM,将细胞筛及注射器内芯放入平皿中。用剪刀和镊子取下小鼠的脾脏,放到细胞筛上。用注射器的内芯轻轻地将脾充分碾碎,将碾好的细胞吸入到装有sp2/0 的离心管中,离心 900rpm/min,5min。
4) 将离心好的细胞,倒掉上清,用无血清的 DMEM 将细胞小心轻柔地吹匀,离心(900rpm/min 5min)。
6) 将离心好的细胞上清尽量倒掉。拍打离心管底充分悬浮细胞,将离心管放入 37℃温水中,在45s 分钟内缓慢加入 1ml 的 PEG,加完后,在温水中静置 1min。然后 2min 内缓慢加入 2ml 的无血清的 DMEM,接着 2min 内缓慢加入 8ml 无血清的DMEM。离心 900rpm/min,5min。
7) 倒掉上清,加入 40ml 的20%血清DMEM,小心的将细胞吹匀,每孔100ul加入事先制备的饲养细胞的96孔培养板中,放入37度培养箱中培养。
1.2.3 亚克隆 采用有限稀释法进行亚克隆。
1.2.4 腹水制备 提前一周腹腔注射0.5ml石蜡油/只。每只小鼠注射约1*10^6个细胞。每天观察小鼠状态,约9天后开始每天收集腹水。
1.2.5 腹水效价测定
3 实验结果
3.1 PCV3 Cap蛋白制备及纯化结果

图1 PCV3 Cap蛋白纯化SDS-PAGE分析结果
3.1 二免后免疫效价测定
断尾采血。三只小鼠分别用红、黑、蓝三种颜色记号笔标记;判定标准就是P/N值大于等于2.1时对应的最大血清稀释度。ELISA结果显示,其中两只小鼠免疫效价均为12800,另一只6400。红和黑标记的小鼠抗体效价均超过10000,达到了细胞融合条件。
3.2初筛结果
用PCV3 Cap蛋白包被板,ELISA法筛选阳性细胞株近40株。分别冻存细胞,并选取16株做亚克隆。
3.3 制备腹水
根据小鼠及细胞情况,制备了其中9株腹水。分别是C11C、C9C、C9E、 D9C、 C7E、C6D 、A8F 、B7D、C6E。重新复苏细胞株,ELISA鉴定为阳性。
3.4 腹水效价检测结果
其中A8F/B7D/C11C效价都在1:64000以上,C9E 1:32000,C6E 1:6000,其余为在1:1000。如下表所示。判定标准为P/N比值大于2.1为阳性(缺少D9C)。
不同稀释度下的P/N值
|
编号 |
|||||||||
|
稀释倍数 |
C7E |
A8F |
C6E |
C9C |
C11C |
C9E |
C6D |
B7D |
小鼠阳性血清 |
|
1000 |
2.18±0.06 |
42.76±1.49 |
8.1±0.04 |
2.31±0.07 |
39.43±2.46 |
22.49±0.46 |
2.38±0.09 |
34.85±2.32 |
55.16±1.28 |
|
2000 |
1.81±0.12 |
33.57±0.5 |
4.82±0.09 |
1.77±0.05 |
39.91±1.22 |
15.37±0.21 |
1.69±0.03 |
27.61±1.92 |
51.89±3.21 |
|
4000 |
1.41±0.05 |
24.34±0.75 |
3.12±0.04 |
1.55±0.04 |
35.91±0.56 |
9.21±0.44 |
1.25±0.06 |
20.76±1.2 |
50.06±1.92 |
|
8000 |
1.29±0.06 |
15.99±0.38 |
2.27±0.05 |
1.2±0.07 |
31.73±1.67 |
5.64±0.29 |
1.08±0.13 |
15.1±0.64 |
45.59±2.57 |
|
16000 |
1.24±0.01 |
11.43±0.62 |
1.73±0.08 |
1.15±0.04 |
25.37±0.71 |
3.75±0.09 |
1.07±0.07 |
9.9±0.51 |
41.24±2.11 |
|
32000 |
1.31±0.15 |
7.54±0.37 |
1.5±0.09 |
1.03±0.06 |
18.69±1.2 |
2.54±0.08 |
1.03±0.03 |
6.37±0.19 |
35.46±2.35 |
|
64000 |
1.13±0.08 |
4.6±0.12 |
1.15±0.1 |
0.99±0.11 |
13.26±0.5 |
1.74±0.18 |
0.88±0.04 |
3.76±0.03 |
27.95±0.95 |
结论:
采用纯化的PCV3 Cap蛋白免疫雌性BALB/c 小鼠,经细胞融合和亚克隆获得了16株能够稳定分泌IgG 型杂交瘤细胞株;后续经过反向筛选鉴定此16株单抗与His标签不反应。目前,兽医科研人才尝试分离PCV3病毒,此16株单抗具有通过免疫组化和间接免疫荧光鉴定PCV3的潜在应用价值。后续我们将继续鉴定此16株单抗是否具有双抗夹心的能力,探索建立双抗夹心法ELISA或胶体金。